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研究生: 溫武哲
Wu-Che Weng
論文名稱: 藥材成分層析研究
The methods to determine Chinese herbs are usually performed by capillary electrophoresis (CE) and high-performance liquid chromatograph
指導教授: 許順吉
Xu, Shun-Ji
學位類別: 博士
Doctor
系所名稱: 化學系
Department of Chemistry
論文出版年: 2000
畢業學年度: 88
語文別: 中文
論文頁數: 250
中文關鍵詞: HPLCCE中藥
英文關鍵詞: HPLC, CE, CHINESE HERBS
論文種類: 學術論文
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  • 高效液相層析(HPLC)及毛細管電泳(CE)分析方法,兩者同屬分離技術,它們遵循不同的分離機制,各有其優缺點,是目前最常用來定量中藥指標成分的分析方法。本研究在開發CE方法,分析川芎及茵陳蒿成分;併用HPLC及CE方法,分析類化合物及柑橘類藥材成分,並比較CE及HPLC方法之優劣,最後利用已開發柑橘類藥材的HPLC分析方法,進行其基原的化學辨識研究。
    結合逆向毛細管區帶電泳層析(reversed EOF CZE)及膠束電動力學毛細管層析(MEKC)兩分析技術,可成功的分離川芎藥材的有機酸及精油成分。於reversed EOF CZE方法,使用70%含8 mM Na2B4O7-3mM NaH2PO4-8 mM LTAC(pH=9.02)的溶液及30% 的CH3CN,可於12分鐘內定量分析九個有機酸(phthalic acid, caffeic acid, protocatchuic acid, folic acid, nicotinic acid, vanillic acid, p-hydroxybenzoic acid, ferulic acid及folinic acid);在MEKC方法中,使用60%含20 mM Na2B4O7-10 mM NaH2PO4-40 mM SDS(pH=9.02)的溶液及20% CH3CN和20 % MeOH,可於30分鐘內定量分析butylphthalide, senkunolide A, ligustilide及butylidenephthalide等四個精油成分。
    使用MEKC分析技術,藉著添加SDS於硼酸鹽緩衝溶液中,以0.05 M NaOH 調pH值至9.82時,可於42分鐘內成功地分離茵陳蒿中的十二個指標成分(phenol, o-cresol, m-cresol, p-cresol, 4-ethyl phenol, 6-ethyl phenol, eugenol, capillarisin, scopletin, chlorogenic acid和caffeic acid),尤其是HPLC中不易分離的cresols及ethyl phenol位置異構物,可在此方法中分離。
    為比較CE與HPLC兩方法之優劣,並了解化合物結構與分析方法的關聯性,本研究分別對十二種較為常見的類化合物(anthraquinone, chrysphanol, aloe-emodin, alizarin, purpurin, emodin, sennoside B, sennoside A, anthraquinone 2-carboxylic acid, quinarizalin, rhein及anthraflavic acid),進行開發CE與HPLC分析方法。在CE部分,採CZE分離模式,使用90%含30 mM Na2B4O7 (以0.05 M NaOH調pH值至10.56)與10%的CH3CN (v/v)為緩衝溶液,於39分鐘內,可分離11個類化合物(anthraquinone除外)。在HPLC部分,利用磷酸鹽及氰甲烷沖提系統,可在63分鐘內,分離十二個類化合物;本分析方法可直接應用於大黃藥材的萃取液,並可定量其中六個成分(chrysphanol, aloe-emodin, emodin, sennoside B, sennoside A及rhein)。實驗結果顯示,兩分析方法在系統的適宜性、分析時間、化合物移動順序及各化合物之理論板數等方面各有明顯差異。
    使用HPLC與CE分析技術,分析柑橘類藥材十八個指標成分(umbelliferone, citropten, imperatorin, narirutin, naringin, naringenin-7-glucoside, hesperidin, neohesperidin, quercetin, naringenin, hesperitin, chrysine, sinensetin, nobiletin, acacetin, tangeretin, 5-demethyl-nobiletin and synephrine)。在HPLC部分,利用磷酸鹽及甲醇/氰甲烷(1/1)沖提系統,可在60分鐘內,分離此十八個化合物;在CE 部分,採MEKC分離模式,使用40 mM Na2B4O7 及40 mM SDS (以0.05 M NaOH調pH值至10.01)與氰甲烷(v/v)為緩衝溶液,於40分鐘內,可分離此十八個化合物中的十三個化合物。本分析方法可直接應用於枳實、枳殼及柑橘藥材的萃取液。
    此外,本研究以HPLC方法,分析市售柑橘類藥材飲片共五十批,進行其基原之化學辨識研究。發現市售枳實只有綠衣枳實一種,而枳殼藥材則有酸橙枳殼及香圓枳殼。酸橙枳殼中HE/NG含量比值>0.49,香圓枳殼含量比值<0.40;在酸橙枳殼中HE/NE之含量比值>2.30,香圓枳殼含量比值<1.31;在酸橙枳殼中NGC/NE之含量比值>0.21,香圓枳殼之含量比值<0.02。根據以上數據,可做為辨識枳實、枳殼基原的參考依據。

    The methods to determine Chinese herbs are usually performed by capillary electrophoresis (CE) and high-performance liquid chromatography (HPLC). Both of these methods follow different separation mechanisms. In this study, CE method was used to assay the contents of constituents of Ligustici Rhizoma and Artemisiae Capillaris Herba. Two techniques including CZE and HPLC have been developed to separate anthraquinones and citrus herbs. The goals of this study are to compare the differences and to establish the relationship of analyses and analytical condition between CE and HPLC. Finally, we used the HPLC method to postulate the origin and quality of the citrus herbs.
    A reversed electroosmotic flow capillary zone electrophoresis (reversed EOF CZE) and a micellar electrokinetic chromatography (MEKC) were developed to analyze the organic acids and essential oil constituents of Ligustici Rhizoma. In reversed EOF CZE method, a buffer solution containing 8 mM sodium borate, 3 mM sodium dihydrogenphosphate and 9 mM lauryltrimethylammonium chloride and acetonitrile (7: 3) were found to be the most suitable approach to determine the contents of phthalic acid, caffeic acid, protocatchuic acid, folic acid, nicotinic acid, vanillic acid, p-hydroxybenzoic acid, ferulic acid and folinic acid within 12 minutes. In MEKC technique based on sodium dodecyl sulfate was applied to analyze butylphthalide, senkunolide A, ligustilide and butylidenephthalide within 30 minutes.
    Using the techniques of MEKC by adding sodium dodecyl sulfate to sodium borate solution and adjusting to pH 9.82 with 0.05 M NaOH, we can separate phenol, o-cresol, m-cresol, p-cresol, 4-ethyl phenol, 6-ethyl phenol, eugenol, capillarisin, scopletin, chlorogenic acid and caffeic acid within 42 minutes. Especially, the isomers of cresol and ethylphenol that can’t be separated in HPLC have been analyzed in this method.
    In order to compare the superiority and shortcoming of both methods and to understand the relationship between chemical structures and analysis methods, this study has developed both CE and HPLC methods for the analysis of twelve anthraquinones (anthraquinone, chrysphanol, aloe-emodin, alizarin, purpurin, emodin, sennoside B, sennoside A, anthraquinone 2-carboxylic acid, quinarizalin, rhein and anthraflavic acid). A buffer solution containing 30 mM sodium borate (adjusted to pH=10.56 with 0.05 M NaOH) and CH3CN (9: 1) in CZE or with a linear gradient elution containing 20 mM KH2PO4 (adjusted to pH=2.91with 0.05% H3PO4) and MeOH in HPLC was found to be the best. Contents of six components (chrysphanol, aloe-emodin, emodin, sennoside B, sennoside A, rhein) in Rhei Rhizoma could easily be determined within 39 minutes by CE or 63 minuts by HPLC. The effect of buffers on this separation and the validation of two methods were studies.
    The HPLC and CE methods for separating citrus herbs were established. The major components of citrus herbs contained umbelliferone, citropten, imperatorin, narirutin, naringin, naringenin-7-glucoside, hesperidin, neohesperidin, quercetin, naringenin, hesperitin, chrysine, sinensetin, nobiletin, acacetin, tangeretin, 5-demethyl-nobiletin and synephrine. The HPLC analysis was carried out within 60 minutes by using a gradient solvent system of phosphate salt buffer-methanol-acetonitrile. Using the techniques of MEKC by adding sodium dodecyl sulfate to sodium borate solution and adjusting to pH 10.01 with 0.05 M NaOH, we could separate eighteen of the thirteen components within 40 minutes. The effect of buffers on this separation and the validation of two methods were studies.
    In addition, we used HPLC method to analyze the citrus herbs collected from market. In this study, we found that the Aurantii Fructus Immaturus belonged to Poncitrus trifoliata RAF, and the Aurnatii Fructus Maturus was derived from Citrus aurantium L. and C. Wilsonii TANAKA. The two kinds of Aurnatii Fructus Maturus can be distinguished by the ratios of HE/NG, HE/NE and NGC/NE. The ratio HE/NG in C. aurantium was higher than 0.49, but less than 0.40 in C. Wilsonii. In addition, the ratio HE/NE was higher than 2.30 for the farmer, but less than 1.31 for the latter; the ratio NGC/NE was higher than 0.21 for the former, and less than 0.02 for the latter. From the data of chemical analysis of an herb’s constituents, we can postulate the origin and quality of the herb.

    目 錄 圖目錄 …………………………………………………….…VII 表目錄 .…………………………………………….………….XI 中文摘要 ………………………………………….……….XIII 英文摘要 ………………………………………………….....XVI 第一章 緒論……………………………………………………1 1-1 前言 …………………………………………………………..….1 1-2 分析儀器 ……………………………………………………..….2 1-2-1 高效能液相層析 ………………………………………….2 1-2-2 毛細管電泳 …………………...………………………….4 1-2-2.1 分離原理 ………………..……………………………..5 1-2-2.2 分離模式 ……………………………………………..7 1-2-2.2a 毛細管區帶電泳(CZE) …………………………..7 1-2-2.2b 膠束電動力學毛細管層析(MEKC) ……………..9 1-2-3 毛細管電泳法和高效能液相層析法之比較 ………….11 1-3 分析條件之參數與適宜性 …………………………………….13 1-3-1 容量因子(capacity factor) ………………………………..13 1-3-2 解析度(resolution) ……………………………………….14 1-3-3 理論板數(theoretical plate number) ……………………..14 1-3-4 拖尾係數(tailing factor) ………………………………….15 1-3-5 直線性(linearity) ………………..………………………16 1-3-6 準確度(accuracy) ...……………………………………….17 1-3-7 精密度(precision) …...…………………………………….17 參考資料 ………………………..…………………………………..18 第二章 川芎成分之CE分析……...…………………………..21 2-1 前言 …………………………………………………………….21 2-2 實驗部份 ……………………………………………………….25 2-2-1 藥品與儀器 ……………………………………………….25 2-2-1.1 實驗藥品 ……………………………………………..25 2-2-1.2 實驗儀器 ……………………………………………..25 2-2-1.3 川芎精油成分標準品的製備 ………………………..26 2-2-3 最佳分析條件 …………………………………………….28 2-2-3.1 reversed EOF CZE分析條件的選擇 ………………..29 2-2-3.2 MEKC 分析條件的選擇 ……………………………..30 2-2-4 配製標準品溶液及製作檢量線 ………………………….30 2-2-5 分析條件之適宜性評估 ………………………………….31 2-3 結果與討論 …………………………………………………….33 2-3-1 分析條件之探討 ………………………………………….33 2-3-1.1 酸鹼值的影響 ………………………………………..34 2-3-1.2 LTAC濃度的影響 ……………………………………35 2-3-1.3 有機修飾劑的影響 …………………………………..35 2-3-2 檢量線之製作 …………………………………………….47 2-3-3 分析條件之適宜性評估 ………………………………….48 2-3-4 市售川芎藥材之分析 …………………………………….49 參考資料 ……………………………………………………………50 第三章 茵陳蒿之毛細管電泳分析……...…………………….54 3-1 前言 …………………………………………………………….54 3-2 實驗部分 ………………………………………………….……59 3-2-1 藥品與儀器 ……………………………………………….59 3-2-1.1 實驗藥品 ……………………………………………..59 3-2-1.2 實驗儀器 ……………………………………………..59 3-2-2 最佳分析條件 …………………………………………….60 3-2-3 緩衝溶液條件的選擇 …………………………………….60 3-2-4 配製標準品溶液及製作檢量線 ………………………….61 3-2-5 分析條件之適宜性評估 ………………………………….62 3-2-6 藥材之定量分析 ………………………………………….62 3-3 結果與討論 …………………………………………………….63 3-3-1 分析條件之探討 ………………………………………….63 3-3-1.1 硼酸鹽的影響 ………………………………………..64 3-3-1.2 SDS濃度的影響 ……………………………………...64 3-3-1.3 酸鹼值的影響 ………………………………………..65 3-3-2 檢量線之製作 …………………………………………….71 3-3-3 分析條件之適宜性評估 ………………………………….72 3-3-4 藥材樣品之分析 ………………………………………….73 參考資料 ……………………………………………………………74 第四章 類化合物之CE與HPLC分析……………..…….77 4-1 前言……………………………………………………………..77 4-2 實驗部分………………………………………………………..80 4-2-1 藥品與儀器………………………………………………..80 4-2-1.1 實驗藥品……………………………………………...80 4-2-1.2 實驗儀器……………………………………………...80 4-2-2 最佳分析條件……………………………………………..81 4-2-2.1 CE 分析條件的選擇………………………………….83 4-2-2.2 HPLC 分析條件的選擇………………………………83 4-2-3 配製標準品溶液及製作檢量線…………………………85 4-2-4 分析條件之適宜性評估…………………………………..86 4-2-5 藥材之定量分析………………….……………………….86 4-3 結果與討論……………………………………………………..87 4-3-1 分析條件之探討…………………………………………..87 4-3-1.1 CE 部分…………………………………………...…..87 4-3-1.2 HPLC 部分………………………………………...….94 4-3-2 檢量線之製作………………………………………...….102 4-3-3 分析條件之適宜性評估……………………………...….104 4-3-4 藥材樣品之分析……………………………...………….106 4-3-5 CE 與 HPLC 之比較……………..…………………...….106 參考資料…………………………………………………………...109 第五章 柑橘類藥材之HPLC及CE分析 5-1 前言…………………………………………………………....112 5-2 實驗部分………………………………………………………118 5-2-1 藥品與儀器………………………………………………118 5-2-1.1 實驗藥品……………………………………………118 5-2-1.2 實驗儀器……………………………………………118 5-2-2 最佳分析條件……………………………………………119 5-2-2.1 HPLC 分析條件的選擇……………………………120 5-2-2.2 CE 分析條件的選擇………………………………121 5-2-3 配製標準品溶液及製作檢量線…………………………122 5-2-4 分析條件之適宜性評估…………………………………123 5-2-5 藥材之定量分析…………………………………………123 5-3 結果與討論……………………………………………………125 5-3-1 分析條件之探討…………………………………………125 5-3-1.1 HPLC 部分…………………………………………..125 5-3-1.2 CE 部分……………………………………………...136 5-3-2 檢量線之製作…………………………………………...145 5-3-3 分析條件之適宜性評估……………………….………...145 5-3-4 藥材樣品之分析……………………………….………...148 5-3-5 CE 與 HPLC 之比較……………………………….…….149 參考資料…………………………………………………………...151 第六章 市售枳實、枳殼藥材基原之化學辨識……...……154 6-1 前言……………………………………………………………154 6-1-1 地道藥材之本草考證………………………...………….154 6-1-2 枳實、枳殼藥材簡介……………………………………155 6-2 實驗部分………………………………………………………160 6-2-1 藥品、藥材與儀器………………………………………160 6-2-1.1 實驗藥品…………………………………………….160 6-2-1.2 實驗藥材……………………………………………160 6-2-1.3 藥材組織鏡檢……………………………………….161 6-2-1.4 實驗儀器…………………………………………….162 6-2-2 最佳分析條件……………………………………………162 6-2-3 柑橘類藥材的定量分析…………………………………163 6-2-3.1 枳實、枳殼之定量分析……………………………163 6-2-3.2 桶柑之定量分析…………………………………….163 6-3 結果與討論……………………………………………………164 6-3-1 市售枳實枳、殼藥材之品種……………………………164 6-3-2 枳殼、枳實藥材成分分析…………………………….164 6-3-3 柑橘生長期的成分含量變化……………………………181 6-3-4 未確定枳殼C類辨別………………………….…………190 參考資料…………………………………………………………...192 第七章 結論…………………………………………………194 圖目錄 圖 1-2-1 高效液相層析儀組成圖……………………………………….3 圖 1-2-2 毛細管層析儀組成圖………………………………………….5 圖 1-2-3 電滲流形成之示意圖………………………………………….6 圖 1-2-4 CZE分離過程示意圖…………………………………………..8 圖 1-2-5 陽離子及陰離子膠束圖………………………………………9 圖 1-2-6 陰離子膠束分離過程圖……………………………………..10 圖 1-2-7 逆向電滲流形成之示意圖…………………………………...11 圖 1-2-8 流型與相應的溶質區帶圖 (a) CE 與 (b) HPLC之流型……..12 圖 1-3-1 不對稱吸收峰示意圖………………………………………...15 圖 2-1-1 川芎飲片………………………………………………………21 圖 2-1-1 川芎標準品……………………………………………………23 圖 2-1-1 川芎標準品(續)………………………………………………23 圖 2-2-1 川芎精油分離流程圖………………………………………...27 圖 2-3-1 逆向電滲流形成示意圖……………………………………33 圖 2-3-2 酸鹼值對遷移時間的影響…………………………………...37 圖 2-3-3 LTAC濃度對遷移時間的影響……………………………….38 圖 2-3-4 氰甲烷比例對遷移時間的影響……………………………...39 圖 2-3-5 Rev-EOF CZE下川芎的(A)九個指標成分之電泳圖譜(B)藥材萃取液之電泳圖譜………………………………………………….40 圖 2-3-6 SDS濃度對遷移時間的影響…………………………………44 圖 2-3-7 甲醇/氰甲烷( v/v)比例對遷移時間的影響………………….45 圖 2-3-8 MEKC下川芎的(A)四個指標成分之電泳圖譜(B)藥材萃取液之電泳圖譜…………………………………………………………46 圖 3-1-1 茵陳蒿藥材之(A)植物 (B)飲片……………………………...54 圖 3-1-2 茵陳蒿之成分結構圖………………………………………...56 圖 3-3-1 硼酸鹽濃度對成分遷移時間的影響………………………...67 圖 3-3-2 SDS濃度對成分遷移時間的影響……………………………68 圖 3-3-3 酸鹼值對成分遷移時間的影響……………………………..69 圖 3-3-4 茵陳蒿的(A)12個指標成分之電泳圖譜(B)藥材萃取液之電泳圖譜…………………………………………………………………..70 圖 4-1-1 類化合物之成分結構圖………………………………...78 圖 4-3-1 硼酸鈉對滯留時間的影響…………………………………...91 圖 4-3-2 酸鹼值對滯留時間的影響…………………………………...92 圖 4-3-3 (A)12個化合類化合物之電泳圖 (B)大黃藥材之毛細管電泳層析圖,偵測波長 260 nm…………………………………………93 圖 4-3-4 磷酸二氫鉀濃度對k’值的影響………………………………98 圖 4-3-5 酸鹼值對k’值的影響…………………………………………99 圖 4-3-6 甲醇/氰甲烷 (v/v) 比例對k’值的影響……………………...100 圖 4-3-7 (A)12類化合物標準品之HPLC層析圖 (B)大黃藥材之HPLC層析圖,偵測波長 260 nm…………………………………101 圖 4-3-8 類化合物結構通式圖………………………………….107 圖 5-1-1 柑橘類藥材指標成分……………………………………….115 圖 5-3-1 磷酸二氫鉀濃度對k’值的影響……………………………..131 圖 5-3-2 酸鹼值對k’值的影響………………………………………..132 圖 5-3-3 甲醇/氰甲烷 (v/v) 比例對k’值的影響……………………...133 圖 5-3-4 (A)十八個指標成分標準品(B)枳殼藥材之HPLC層析圖,偵測波長 280 nm………………………………………………….….134 圖 5-3-5 (C)枳實藥材(D)柑橘藥材之HPLC層析圖偵測波長280 nm…135 圖 5-3-6 硼酸鈉濃度對遷移時間的影響…………………………….140 圖 5-3-7 酸鹼值對遷移時間的影響………………………………….141 圖 5-3-8 SDS濃度對遷移時間的影響………………………………..142 圖 5-3-9 氰甲烷比例(v/v)對遷移時間的影響……………………….143 圖 5-3-10 (A) 十八個指標成分 (B)枳殼藥材之毛細管電泳層析圖..144 圖 6-1-1 切半之枳殼藥材圖………………………………………….155 圖 6-1-2 枳殼藥材之飲片圖………………………………………….155 圖 6-1-3 枳實藥材之飲片圖………………………………………….155 圖 6-3-1 (A) 酸橙枳殼 (B) 香園枳殼之HPLC層析圖……………….174 圖 6-3-1 (C) 綠衣枳實之HPLC層析圖……………………………….175 圖 6-3-2 綠衣枳實各成份平均含量圖(n=20)………………………..176 圖 6-3-3 酸橙枳殼各成份平均含量圖(n=15).……………………….176 圖 6-3-4 香園枳殼各成份平均含量圖(n=10)………………………..177 圖 6-3-5 綠衣枳實各成分雷達圖…………………………………….178 圖 6-3-6 綠衣枳實五成分雷達圖…………………………………….178 圖 6-3-7 酸橙枳殼各成分雷達圖…………………………………….179 圖 6-3-8 酸橙枳殼五成分雷達圖…………………………………….179 圖 6-3-9 香園枳殼各成分雷達圖…………………………………….180 圖 6-3-10 香園枳殼五成分雷達圖…………………………………...180 圖 6-3-11 桶柑藥材之鮮品與乾品重………………………………...182 圖 6-3-12 桶柑藥材之HPLC層析圖…………………………………182 圖 6-3-13 桶柑藥材之成份變化圖…………………………………...182 圖 6-3-14 桶柑藥材於各不同時期之HPLC層析圖………………….186 圖 6-3-15 五種柑橘類藥材之類黃酮素及香豆素成分變化趨勢…...189 表目錄 表 2-3-1 不同CH3OH/CH3CN (v/v)比例下LI-SE及BD-BP的解析度(Rs)....43 表 2-3-2 偵測極限及再現性評估(n=6)………………………………..48 表 3-3-1 部分成分在不同酸鹼值的解析度(Rs)……………………....66 表 3-3-2 分析條件之再現性評估及回收率…………………………...72 表 3-3-3 茵陳蒿指標成分之偵測極限 ( S/N=3 )……………………73 表 4-2-1 化合物分析方法之梯度沖提程式……………………..82 表 4-2-2 分離管柱的種類及其材質表………………………………..84 表 4-3-1 部分類化合物在不同pH值的解析度(Rs)……………...89 表 4-3-2 EM在不同pH值的拖尾係數(Tailing factor)………………..89 表 4-3-3 不同管柱對各化合物對的解析度(Rs)………………………95 表 4-3-4 CE及HPLC的線性範圍及檢量線參數…………………….103 表 4-3-5 類化合物CE及HPLC之再現性……………………….105 表 5-2-1 十八個指標成分分析方法之梯度沖提程式……………119 表 5-3-1 不同管柱對各組化合物解析度(Rs)的影響………………..126 表 5-3-2 磷酸鹽濃度與組成成分理論板數的關係(&acute;104)…………..128 表 5-3-3 不同甲醇/氰甲烷(v/v)比例與組成成分的理論板數(&acute;104)..129 表 5-3-4 不同甲醇/氰甲烷(v/v)比例與組成成分的解析度(Rs)…….130 表 5-3-5 部分化合物在不同pH值下的解析度(Rs)…………………138 表 5-3-6 化合物在不同氰甲烷比例下的理論板數(×104)…………..139 表 5-3-7 十八個指標成分的線性範圍及檢量線參數……………….146 表 5-3-8 分析條件之CE及HPLC再現性評估………………………..147 表 5-3-9 各化合物於HPLC及CE的理論板數(×104)……………….150 表 6-1-1 五種不同品種枳殼(實)類藥材比較表……………………...157 表 6-2-1 台灣市售枳實藥材飲片之採購地點及日期……………….160 表 6-2-2 台灣市售枳殼藥材飲片之採購地點及日期……………….161 表 6-2-3 枳實、枳殼藥材之梯度沖提程式…………………………162 表 6-3-1 綠衣枳實藥材成分定量結果(mg/g)………………………..167 表 6-3-2 酸橙枳殼藥材成分定量結果(mg/g) ……………………….168 表 6-3-3 香園枳殼藥材成分定量結果(mg/g) ……………………….169 表 6-3-4 未定出品種之成分定量結果(mg/g) ……………………….170 表 6-3-5酸橙枳殼及香園枳殼的差異………………………………..172 表 6-3-6 桶柑藥材的水份含量(兩顆果實平均值) ………………….181 表 6-3-7 桶柑果實的外觀顏色及大小……………………………….183 表 6-3-8 桶柑藥材的各成分含量(mg/g)……………………………..184 表 7-1 酸橙枳殼與香圓枳殼的辨別………………………………..197 表 7-2 HPLC與CE兩方法的優劣比較……………………………..198

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